Cursos: Curso de Tecnico en Microbiologia

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Cursos: Curso de Tecnico en Microbiologia

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OBJETIVOS

- Analizar las técnicas de organización y de gestión del área de trabajo asignada en el laboratorio.
- Analizar las distintas técnicas y sistemas de procesamiento de muestra biológicas humanas.
- Analizar las técnicas inmunológicas con finalidad diagnóstica.
- Analizar las técnicas de cultivo y de identificación de bacterias y hongos empleadas en microbiología clínica.
- Analizar las técnicas de cultivo celular orientadas al diagnóstico en virología.
- Aplicar las principales técnicas de estudio de parásitos empleadas en microbiologia clínica.
- Analizar las principales técnicas de determinación y manipulación genética en el estudio de las muestras biológicas

GESTION DE PRACTICAS Y EMPLEO

Una vez finalizado el proceso de formación teórica el alumno recibirá un apoyo de orientación laboral.
Este apoyo consta de gestión de prácticas y gestión de empleo.
Este servicio totalmente gratuito, ayuda a numerosas empresas a encontrar a las personas idóneas para cubrir el puesto de trabajo solicitado, constituye una herramienta de gran utilidad como factor de mejora profesional a nuestros alumnos.


· Temario:

MÓDULO 1. ORGANIZACIÓN Y GESTIÓN DE UN LABORATORIO.

- Documentación sanitaria:
• Documentación clínica.
• Documentación no clínica.
- Organización jerárquica y departamental de un centro sanitario:
• Organigramas de centros sanitarios.
• Organigrama de un laboratorio.
• Funciones del personal de un laboratorio.
- Normas de seguridad en el trabajo referidas a los aparatos y las instalaciones de los laboratorios clínicos para la prevención de riesgos físicos y químicos.
- Gestión de existencias:
• Sistemas de almacenamiento.
• Métodos de valoración de existencias.
• Normas de seguridad e higiene en los almacenes de centros sanitarios.
- Conservación de equipos:
• Tipos de equipos de un laboratorio clínico.
• Mantenimiento periódico de los equipos de laboratorio.
• Medidas a tomar en caso de fallo de los equipos.
- Aplicaciones informáticas:
• Conocimientos básicos de informática.
• Tipos y estructura de las bases de datos.
• Aplicaciones informáticas de gestión y control de almacén.
- Estadística básica:
• Medidas de tendencia central.
• Medidas de dispersión.
• Representaciones gráficas de resultados.
- Información científico-técnica:
• Estructura de presentación de la información científica.
• Búsqueda de información en bases de datos sanitarias.

MÓDULO 2. TÉCNICAS DE PROCESAMIENTO DE MUESTRAS BIOLÓGICAS.

- Muestras biológicas humanas:
• Concepto de espécimen y de muestra.
• Características generales de la sangre:
Diferencia entre sangre venosa y sangre capilar
Uso de sangre en ayunas
Utilización de suero o plasma
Hemólisis, lipemia o ictericia como fuentes de error
Anticoagulantes
• Características generales de la orina:
Sustancias y elementos formes analizables en muestras de orina
• Características generales de las heces.
• Muestras seminales; LCR, líquidos serosos, exudados vaginales, exudados uretrales, exudados óticos, exudados conjuntivales y exudados nasofaríngeos; esputos y hemocultivos.
- Obtención de las muestras biológicas:
• Obtención de plasma y suero.
• Recogida de orina.
• Recogida de heces.
- Manipulación de las muestras biológicas:
• Sistemas de transporte de las muestras.
• Sistemas de recepción, identificación y distribución de las muestras.
• Centrifugación de muestras: fundamento de las técnicas de centrifugación.
• Conservación de las muestras biológicas.
• Normas de seguridad e higiene para la prevención de riesgos biológicos.
- Técnicas de preparación de reactivos:
• Conceptos de molaridad, normalidad y molalidad.
• Métodos de cálculo y técnicas de ajuste del pH.
• Cálculos necesarios para la preparación de disoluciones.
- Cálculos en la realización de diluciones.
- Normas de seguridad e higiene en la manipulación de muestras biológicas.

MÓDULO 3. TÉCNICAS INMUNOLÓGICAS.

- Fisiología de la respuesta inmune:
• Inmunidad celular.
• Concepto de antígeno y formación de anticuerpos.
• Reacción antígeno-anticuerpo.
• Sistema de complemento.
• Antígenos de histocompatibilidad.
• Mecanismos de la respuesta inmune.
• Autoinmunidad, inmunodeficiencia e hipersensibilidad.
- Técnicas de análisis basadas en la precipitación y aglutinación de complejos antígeno-anticuerpo:
• Precipitación en medio líquido.
• Técnicas de precipitación en gel.
• Técnicas de aglutinación con hematíes y látex.
• Técnicas de inhibición de la aglutinación.
• Fijación del complemento.
- Inmunoensayos:
• Radioinmunoensayos.
• Enzimainmunoensayos.
• Fluoroinmunoensayos.
• Ensayos con marcadores quimioluminiscentes y bioluminiscentes.
- Inmunofluorescencia:
• Microscopio de fluorescencia.
• Fluoróforos.
• Inmunofluorescencia directa.
• Inmunofluorescencia indirecta.
- Control de calidad de las técnicas inmunológicas:
• Controles internos y externos.
• Programas de control de calidad.
• Coeficientes de variación.
• Gráficos de control de calidad.

MÓDULO 4. TÉCNICAS DE CULTIVO E IDENTIFICACIÓN EN MICROBIOLOGÍA CLÍNICA.

- Bacterias y hongos:
• Taxonomía de bacterias y hongos.
• Estructuras bacterianas y de hongos.
- Técnicas de limpieza y esterilización:
• Conceptos de limpieza, desinfección y esterilización.
• Tipo de material para la limpieza, desinfección y esterilización.
• Clasificación del material, según la técnica a utilizar.
- Técnicas de observación microscópica de microorganismos:
• Microscopía óptica.
• Visualización in vivo.
• Fijación y tinciones de bacterias y hongos.
- Tipificación bioquímica:
• Actividad biológica y requerimientos de bacterias y hongos.
• Pruebas de identificación bioquímica.
- Medios de cultivo:
• Componentes de los medios de cultivo.
• Clasificación de los medios de cultivo.
• Preparación de los medios de cultivo.
• Medios de cultivo especiales.
• Cultivo de anaerobios. Cámara de anaerobiosis.
• Aislamiento y recuento de bacterias.
- Antibiograma:
• Mecanismos de acción de los antibióticos.
• Técnicas de antibiograma.
• Resistencia bacteriana.
• Técnicas rápidas para el estudio de las resistencias a antibióticos.
- Control de calidad en microbiología:
• Controles internos y externos.
• Programas de control de calidad.
• Coeficientes de variación.
• Gráficos de control de calidad.

MÓDULO 5. TÉCNICAS DE CULTIVO EN VIROLOGÍA.

- Virología general:
• Composición y estructura de los virus.
• Taxonomía vírica.
• Enfermedades causadas por virus.
- Técnicas de purificación de virus:
• Fuentes de obtención de virus.
• Contaminantes en la purificación de virus.
• Procesos en la purificación de virus.
• Técnicas de ultracentrifugación.
- Técnicas de multiplicación de virus en cultivos celulares:
• Requerimientos físicos y nutritivos de los cultivos celulares.
• Factores de crecimiento.
• Destoxificación de cultivos.
• Tipos de cultivos.
• Titulación de virus para el diagnóstico.
- Control de calidad en virología:
• Controles internos y externos.
• Programas de control de calidad.
• Coeficientes de variación.
• Gráficos de control de calidad.

MÓDULO 6. TÉCNICAS DE ANÁLISIS E IDENTIFICACIÓN DE PARÁSITOS.

- Parasitología:
• Definición de parásito.
• Tipos de parásitos.
• Descripción y patogenia de los principales parásitos patógenos para el hombre.
- Observación macroscópica de parásitos en heces.
- Observación microscópica de parásitos en distintas muestras:
• Examen en fresco.
• Tinción vital.
• Tinciones permanentes.
• Técnicas especiales
- Métodos de concentración de parásitos:
• Sedimentación y centrifugación.
• Flotación.
- Técnicas inmunológicas en la detección de parásitos:
• Problemas en la obtención de anticuerpos para parásitos.
• Hemaglutinación indirecta.
• Doble difusión en gel.
• Fijación del complemento.
• Inmunoelectroforesis.
• Aglutinación en látex.
• Inmunofluorescencia indirecta.
• Enzimainmunoensayo.
- Control de calidad en parasitología:
• Controles internos y externos.
• Programas de control de calidad.
• Coeficientes de variación.
• Gráficos de control de calidad

MODULO 7. TÉCNICAS DE ANÁLISIS MOLECULAR.

- Estructura y función de los ácidos nucleicos:
• Estructura del núcleo, la cromatina y los cromosomas.
• El ácido desoxirribonucleico como material genético.
• Desnaturalización del ADN.
• Replicación, trascripción y traducción de la información genética.
• Principios básicos de la regulación genética.
• Alteraciones en el ADN: mutaciones.
- Objetivos y técnicas de los estudios cromosómicos:
• Cultivos de linfocitos y de fibroblastos.
• Preparación de las muestras.
• Microfotografías e identificación de los cromosomas.
- Técnicas básicas en el diagnóstico molecular:
• Electroforesis de ácidos nucleicos.
• Sondas genéticas. Técnicas de marcado de sondas.
• Técnicas de transferencia e hibridación de ácidos nucleicos y proteínas: Southern, Northern y Western “blotting”, “Dot Blot” e Hibridación “in situ”.
• Enzimas de restricción y técnicas de ruptura inespecífica de ADN.
• Tecnología del ADN recombinante.
• ADNc.
• Amplificación mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
• Análisis de secuencias de ADN.
• Transferencia de ADN a células eucariotas.
- Aplicación de la genética molecular.
• Aplicación de la genética molecular al diagnóstico de enfermedades hereditarias:
Análisis molecular directo e indirecto.
Ejemplos de patologías estudiadas mediante técnicas de genética molecular.
• Aplicación de la genética molecular al estudio de enfermedades genéticas adquiridas (cáncer):
Funciones de los oncogenes y factores de crecimiento.
Genes de la familia ras.
• Aplicación de la genética molecular al estudio de las patologías infecciosas.
• Aplicación de la genética molecular en medicina legal y forense


· Duracion: 600 horas

· Titulacion que se obtiene: La superación del programa, permitirá al alumno obtener el TITULO-CERTIFICACIÓN DE ESPECIALIZACIÓN PROFESIONAL expedido por FORMACIÓN UNIVERSITARIA. Además podrás solicitar la tramitación del prestigioso diploma de la Asociación Española de Enseñanzas Técnico Profesionales (AEDETP)

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